Сравнительное изучение лекарственной чувствительности медленнорастущих микобактерий (М. kansasii и М. xenopi)

Метод серийных микроразведений (Sensititre® SlowMyco) позволяет получить количественные данные о степени чувствительности/устойчивости микобактерий. При изучении лекарственной чувствительности M. kansasii и M. xenopi установлено, что большинство культур этих видов были устойчивы к противотуберкулезным и чувствительны к другим антибактериальным препаратам, применяющимся для лечения патологии, вызываемой этими нетуберкулезными микобактериями. Вместе с тем M. kansasii были более устойчивыми к триметоприм/сульфаметоксазолу и ципрофлоксацину, а M. xenopi – к этамбутолу и этионамиду. При этом следует подчеркнуть, что ко многим исследованным антибактериальным препаратам определена значительная часть (> 10%) штаммов M. kansasii и M. xenopi с промежуточной чувствительностью, что создает определенный резерв для использования этих препаратов в терапии микобактериоза при высокой степени лекарственной устойчивости возбудителя.

1. Андреевская С.Н., Ларионова Е.Е., Смирнова Т.Г. и др. Лекарственная чувствительность медленнорастущих нетуберкулезных микобактерий // Туберкулез и болезни легких. – 2016. – № 4. – С. 43-50.

2. Гунтупова Л.Д., Борисов С.Е., Соловьева И.П. и др. Клинико-морфологическая характеристика микобактериозов легких // Архив патологии. – 2011. – Т. 73. – № 5. – С. 12-16.

3. Литвинов В.И., Макарова М.В., Краснова М.А. Нетуберкулезные микобактерии. – М.: МНПЦБТ. – 2008. – 255 с.

4. Литвинов В.И., Мороз А.М. (титул. ред.) Лабораторные исследования при туберкулезе. – М.: МНПЦБТ. – 2013. – 342 с.

5. Литвинов В.И., Богородская Е.М., Борисов С.Е. Нетуберкулезные микобактерии, микобактериозы. – М.: МНПЦБТ. – 2014. – 254 С.

6. Макарова М.В., Крылова Л.Ю., Носова Е.Ю., Литвинов В.И. Характеристика штаммов M. tuberculosis с широкой лекарственной устойчивостью с помощью тест-системы Sensititre MycoTB (предпосылки для внесения корректив в лечение больных туберкулезом с ШЛУ возбудителя) // Туберкулез и социально значимые заболевания. – 2016. – № 2. – С. 38-43.

7. Оттен Т.Ф., Васильев А.В. Микобактериоз. – СПб.: Мед. пресса, 2005. – 224 с.

8. Abuali M. M., Katariwala R., LaBombardi V.J. A comparison of the Sensititre® MYCOTB panel and the agar proportion method for the susceptibility testing of Mycobacterium tuberculosis // Eur. J. Clin. Microbiol. Infect. Dis. – 2011. – Vol. 31. – N. 5. – P. 835-839.

9. Alcaide F., Calatayud L., Santín M., Martín R. Comparative in vitro activities of linezolid, telithromycin, clarithromycin, levofloxacin, moxifloxacin, and four conventional antimycobacterial drugs against Mycobacterium kansasii // Antimicrob. Agents. Chemother. – 2004. – Vol. 48. – N. 12. – P. 4562-4565.

10. Alvarez-Uria G. Lung disease caused by nontuberculous mycobacteria // Curr. Opin. Pulm. Med. – 2010. – Vol. 16. – N. 3. – P. 251-256.

11. Babady N., Hall L., Abbenyi A. et al. Evaluation of Mycobacterium avium complex clarithromycin susceptibility testing using SLOMYCO Sensititre panels and Just-One strips // J. Clin. Microbiol. – 2010. – Vol. 48. – N. 5. – P. 1749-1752.

12. Brode S., Daley C., Marras T. The epidemiologic relationship between tuberculosis and non-tuberculous mycobacterial disease: a systematic review // Int. J. Tuberc. Lung. Dis. – 2014. – Vol. 18. – N. 11. – P. 1370-1377.

13. Brown-Elliott B., Griffith D., Wallace R. Diagnosis of nontuberculous mycobacterial infections // J. Clin. Lab. Med. – 2002. – Vol. 22. – P. 911-925.

14. Brown-Elliott B., Wallace R. Infections caused by nontuberculous mycobacteria // In: Principles and Practice of Infectious Disease. (eds. Mandell G.). – 2005. – Vol. 2. – P. 2909-2916.

15. Brown-Elliott B., Nash K., Wallace R. Antimicrobial susceptibility testing, drug resistance mechanisms, and therapy of infections with nontuberculous mycobacteria // Clin. Microbiol. Rev. – 2012. – Vol. 25. – N. 3. – P. 545-582.

16. Cavusoglu C., Gurpinar T., Ecemis T. Evaluation of antimicrobial susceptibilities of rapidly growing mycobacteria by Sensititre RAPMYCO panel // New Microbiol. – 2012. – V. 35. – N. 1. – P. 73-76.

17. Chakravorty S., Lee J., Cho E. et al. Genotypic susceptibility testing of Mycobacterium tuberculosis isolates for amikacin and kanamycin resistance by use of a rapid sloppy molecular beacon-based assay identifies more cases of low-level drug resistance than phenotypic Lowenstein-Jensen testing // J. Clin. Microbiol. – 2015. – Vol. 53. – N. 1. – P. 43-51.

18. CLSI. Susceptibility testing of mycobacteria, nocardiae, and other aerobic actinomycetes; approved standard – second edition // CLSI document M24-A2. Wayne, PA: Clinical and Laboratory Standards Institute; 2011.

19. Daley C. Mycobacterial infections // Semin. Respir. Crit. Care Med. – 2013. – Vol. 34. – N. 1. – P. 1-22.

20. Deshpande D., Srivastava S., Meek C. et.al. Moxifloxacin pharmaco-kinetics/pharmacodynamics and optimal dose and susceptibility breakpoint identification for treatment of disseminated Mycobacterium avium infection // Antimicrob. Agents. Chemother. – 2010. – Vol. 54. – N. 6. – P. 534-539.

21. Deshpande D., Gumbo T. Pharmacokinetic/pharmacodynamic-based treatment of disseminated Mycobacterium avium // Future Microbiol. – 2011. – Vol. 6. – N. 4. – P. 433-439.

22. Glassroth J. Pulmonary disease due to nontuberculous mycobacteria // Chest. – 2008. – Vol. 133. – N. 1. – P. 243-251.

23. Griffith D., Aksamit T., Brown-Elliott B. et. al. An official ATS/IDSA statement: diagnosis, treatment, and prevention of nontuberculous mycobacterial diseases // J. Respir. Crit. Care Med. – 2007. – Vol. 175. – N. 4. – P. 367-416.

24. Guna R., Muñoz C., Domínguez V. et al. In vitro activity of linezolid, clarithromycin and moxifloxacin against clinical isolates of Mycobacterium kansasii // J. Antimicrob. Chemother. – 2005. – Vol. 55. – N. 6. – P. 950-953.

25. Hall L., Jude K. P., Clark S.L. et al. Evaluation of the Sensititre MycoTB Plate for Susceptibility Testing of the Mycobacterium tuberculosis сomplex against First- and Second-Line Agents // J. Clin.Microbiol. – 2012. – Vol. 50. – N. 11. – P. 3732-3734.

26. Heifets L. Drug susceptibility in the chemotherapy of mycobacterial infections // CRC Press. Boca Raton Ann Arbor Boston. London, 2000. – P. 212.

27. Heifets L. Mycobacterial infections caused by nontuberculous mycobacteria // Semin. in Respir. Crit. Care Med. – 2004. – Vol. 25. – N. 3. – P. 283-295.

28. Hoefsloot W., van Ingen J., Andrejak C. et al. The geographic diversity of nontuberculous mycobacteria isolated from pulmonary samples: an NTM-NET collaborative study // Eur. Respir. J. – 2013. – Vol. 42. – N. 6. – P. 1604-1613.

29. Horsburgh C., Mason U., Heifets L. et.al. Response to therapy of pulmonary Mycobacterium avium-intracellulare infection correlates with results of in vitro susceptibility testing // Am. Rev. Respir. Dis. – 1987. – Vol. 135. – N. 2. – P. 418-421.

30. Iseman M. Medical management of pulmonary disease caused by M. avium complex // Clin. Chest. Med. – 2003. – Vol. 23. – P. 633-641.

31. Jenkins P., Campbell I. Pulmonary disease caused by Mycobacterium xenopi in HIV-negative patients: five-year follow-up of patients receiving standardised treatment // Respir. Med. – 2003. – Vol. 97. – N. 4. – P. 439-444.

32. Jubulis J., Dionne K., Osterhout G. Mycobacterium tuberculosis resistance in pulmonary TB patients in Cameroon: a phenotypic susceptibility assay // Int. J. Tuberc. Lung. Dis. – 2015. – Vol. 19. – N. 7. – P. 823-827.

33. Lee J, Armstrong D, Ssengooba W. et al. Sensititre MYCOTB MIC plate for testing Mycobacterium tuberculosis susceptibility to first- and second – line drugs // Antimicrob. Agents Chemother. – 2014. – Vol. 58. – N. 1. – P. 11-18.

34. Mpagama S., Houpt E., Stroup S. et al. Application of quantitative second-line drug susceptibility at a multidrug-resistant tuberculosis hospital in Tanzania // BMC Infectious Diseases. – 2013. – Vol. 13. – P. 432-441.

35. Park C., Kwon Y. Respiratory review of 2014: tuberculosis and nontuberculous mycobacterial pulmonary disease // Tuberc. Respir. Dis. (Seoul). – 2014. – Vol. 77. – N. 4. – P. 161-166.

36. Prevots D., Marras T. Epidemiology of human pulmonary infection with nontuberculous mycobacteria: a review // Clin. Chest. Med. – 2015. – Vol. 36. – N. 1. – P. 13-34.

37. Stout J., Koh W., Yew W. Update on pulmonary disease due to non-tuberculous mycobacteria // Int. J. Infect. Dis. – 2016. – Vol. 45. – P. 123-134.

38. Tortoli E. Clinical manifestations of nontuberculous mycobacteria infections // Clin. Microbiol. Infect. – 2009. – Vol. 15. – N. 10. – P. 906-910.

39. van der Werf M., Ködmön C., Katalinić-Janković V. et al. Inventory study of non-tuberculous mycobacteria in the European Union // BMC Infect. Dis. – 2014. – Vol. 14. – P. 62. Supplementary files.

40. van Ingen J. Diagnosis of nontuberculous mycobacterial infections // Semin. Respir. Crit. Care Med. – 2013. – Vol. 34. – N. 1. – P. 103-109.

41. van Ingen J. Microbiological diagnosis of nontuberculous mycobacterial pulmonary disease // Clin. Chest. Med. – 2015. – Vol. 36. – N. 1. – P. 43-54.

42. Varadi R., Marras T. Pulmonary Mycobacterium xenopi infection in non-HIV-infected patients: a systematic review // Int. J. Tuberc. Lung. Dis. – 2009. – Vol. 13. – N. 10. – P. 1210-1218.

43. Woods G. Susceptibility testing for mycobacteria // Clin. Infect. Dis. – 2000. – Vol. 31. – N. 5. – P. 1209-1215.