Характеристика лекарственной чувствительности клинических штаммов Mycobacterium tuberculosis, выделенных от впервые выявленных больных в городе Москве

Изучено 189 штаммов M. tuberculosis, выделенных от 189 больных с впервые выявленным туберкулезом. Определена лекарственная чувствительность (преимущественно в системе BACTEC™ MGIT™ 960) к антибактериальным препаратам, которые применяются для лечения таких больных. Установлено, что M. tuberculosis, выделенные от впервые выявленных больных в городе Москве, обладают разным уровнем чувствительности к исследованным антибактериальным препаратам (от 100,0% к линезолиду и 99,5% к циклосерину до 52,9% к стрептомицину и 57,7% к изониазиду). В целом к большинству антибактериальных препаратов значительная часть изученных штаммов сохраняет чувствительность, множественной лекарственной устойчивостью обладает менее 1/3 штаммов (28,6%), а широкой – менее 5% (4,2%). Такая ситуация имеет место, несмотря на ряд сложных обстоятельств (миграция из регионов с высоким уровнем заболеваемости туберкулезом, высокая частота случаев развития сочетанной патологии – ВИЧ и туберкулез). Это является следствием хорошей организации противотуберкулезной работы (своевременное выявление туберкулеза, индивидуализированное и контролируемое высокоэффективное лечение).

1. Васильева И.А., Багдасарян Т.Р., Баласанянц Г.С., Богородская Е.М., Борисов С.Е. и др. Федеральные клинические рекомендации по диагностике и лечению туберкулеза органов дыхания с множественной и широкой лекарственной устойчивостью возбудителя. – Москва, 2015. (3-е издание).

2. Васильева И.А., Белиловский Е.М., Борисов С.Е., Стерликов С.А. Туберкулез с множественной лекарственной устойчивостью возбудителя в странах мира и в Российской Федерации // Туберкулез и болезни легких. – 2017. – Т. 95. – № 11. – С. 5-17.

3. Лабораторные исследования при туберкулезе / Под ред. В.И. Литвинова, А.М. Мороза. – М.: МНПЦБТ, 2013. – 343 с.

4. Литвинов В.И., Макарова М.В., Носова Е.Ю., Сафонова С.Г. Изучение лекарственной чувствительности микобактерий туберкулеза // Туберкулез и социально значимые заболевания. – 2016. – № 4. – С. 45-55.

5. Макарова М.В., Сафонова С.Г., Крылова Л.Ю., Литвинова Н.В., Носова Е.Ю., Литвинов В.И. Определение лекарственной чувствительности M. tuberculosis с помощью тест-системы Sensititre® MYCOTB TREK Diagnostics // Туберкулез и болезни легких. – М. – 2015. – № 4. – С. 42-46.

6. Макарова М.В., Крылова Л.Ю., Носова Е.Ю., Литвинов В.И. Характеристика штаммов M. tuberculosis с широкой лекарственной устойчивостью с помощью тест-системы SENSITITRE MYCOTB (предпосылки для внесения корректив в лечение больных туберкулезом с широкой лекарственной устойчивостью возбудителя) // Туберкулез и социально значимые заболевания. – 2016. – № 2. – C. 38-43.

7. Макарова М.В., Крылова Л.Ю., Сафонова С.Г., Литвинова Н.В., Носова Е.Ю., Литвинов В.И. Определение лекарственной чувствительности M. tuberculosis, выделенных от больных туберкулезом с множественной лекарственной устойчивостью, в тест-системе «SENSITITRE MYCOTB» // Клиническая лабораторная диагностика. – 2016. – Т. 61. – № 5. – C. 308-310.

8. Противотуберкулезная работа в городе Москве. Аналитический обзор статистических показателей по туберкулезу. 2012 г. / Под ред. Е.М. Богородской, В.И. Литвинова. – М.: МНПЦБТ, 2013. – 164 с.

9. Противотуберкулезная работа в городе Москве. Аналитический обзор статистических показателей по туберкулезу. 2017 г. / Под ред. Е.М. Богородской, В.И. Литвинова, Е.М. Белиловского. – М.: МНПЦБТ, 2018. – 288 с.

10. Abuali M., Katariwala R., LaBombardi V. A comparison of the Sensititre® MYCOTB panel and the agar proportion method for the susceptibility testing of Mycobacterium tuberculosis // Eur. J. Clin. Microbiol. Infect. Dis. – 2012. – Vol. 31. – N. 5. – P. 835-839.

11. Ahmed M., Velayati A., Mohammed S. Epidemiology of multidrug-resistant, extensively drug resistant, and totally drug resistant tuberculosis in Middle East countries // Int. J. Mycobacteriol. – 2016. – Vol. 5. – N. 3. – P. 249-256. doi: 10.1016/j.ijmyco.2016.08.008.

12. Banu S., Rahman S., Khan M. et al. Discordance across several methods for drug susceptibility testing of drug-resistant Mycobacterium tuberculosis isolates in a single laboratory // J. Clin. Microbiol. – 2014. – Vol. 52. – N. 1. – P. 156-163. doi: 10.1128/ JCM.02378-13.

13. Bloom B., Atun R., Cohen T. et al. Tuberculosis // In: Holmes K.K., Bertozzi S., Bloom B.R., Jha P., editors. Major Infectious Diseases. 3rd ed. – Washington (DC): The International Bank for Reconstruction and Development / The World Bank; 2017 Nov 3. Chapter 11.

14. Cambau E., Viveiros M., Machado D. et al. Revisiting susceptibility testing in MDR-TB by a standardized quantitative phenotypic assessment in a European multicentre study // J. Antimicrob. Chemother. – 2015. – Vol. 70. – N. 3. – P. 686-696. doi: 10.1093/jac/dku438.

15. Cho S., Lee H., Franzblau S. Microplate alamar blue assay (MABA) and low oxygen recovery assay (LORA) for Mycobacterium tuberculosis // Methods. Mol. Biol. – 2015. – Vol. 1285. – P. 281-292. doi: 10.1007/978-1-4939-2450-9_17.

16. Collins L., Franzblau S. Microplate alamar blue assay versus BACTEC 460 system for high-throughput screening of compounds against Mycobacterium tuberculosis and Mycobacterium avium // Antimicrob. Agents. Chemother. – 1997. – Vol. 41. – N. 5. – P. 1004-1009.

17. Dean A., Cox H., Zignol M. Epidemiology of drug-resistant tuberculosis // Adv. Exp. Med. Biol. – 2017. – Vol. 1019. – Р. 209-220. doi: 10.1007/978-3-319-64371-7_11.

18. Dheda K., Gumbo T., Maartens G. et al. The epidemiology, pathogenesis, transmission, diagnosis, and management of multidrug-resistant, extensively drug-resistant, and incurable tuberculosis // Lancet. Respir. Med. – 2017. – Vol. 5. – P. 291-360. doi: 10.1016/S2213-2600(17)30079-6.

19. Goyal V., Kadam V., Narang P., Singh V. Prevalence of drug-resistant pulmonary tuberculosis in India: systematic review and meta-analysis // BMC Public. Health. – 2017. – Vol. 17. – N. 1. – P. 817. doi: 10.1186/s12889-017-4779-5.

20. Grobusch M., Schaumburg F., Altpeter E., Bélard S. Drug-resistant tuberculosis. Epidemiology, diagnostics and therapy // Internist. (Berl). – 2016. – Vol. 57. – N. 2. – P. 126-135. doi: 10.1007/s00108-015-0010-x.

21. Günther G. Multidrug-resistant and extensively drug-resistant tuberculosis: a review of current concepts and future challenges // Clin. Med. (Lond). – 2014. –Vol. 14. – N. 3. – P. 279-285. doi: 10.7861/clinmedicine.14-3-279.

22. Günther G., van Leth F., Alexandru S. et al. Multidrug-resistant tuberculosis in Europe, 2010-2011 // Emerg. Infect. Dis. – 2015. – Vol. 21. – N. 3. – P. 409-416. doi: 10.3201/eid2103.141343.

23. Hall L., Jude K., Clark S. et al. Evaluation of the Sensititre MycoTB plate for susceptibility testing of the Mycobacterium tuberculosis complex against first- and second-line agents // J. Clin. Microbiol. – 2012. – Vol. 50. – N. 11. – P. 3732-3734. doi: 10.1128/ JCM.02048-12.

24. Halwai D., Gurung R., Poudyal N. et al. Evaluation of nitrate reductase assay in 7H11 agar for diagnosis of multi-drug-resistant tuberculosis in eastern Nepal // Trop. Med. Health. – 2018. – Vol. 46. – P. 26. doi: 10.1186/s41182-018-0109-6.

25. Hashmi H., Javed H., Jamil N. Emerging epidemic of drug resistant tuberculosis in vulnerable populations of developing countries // Afr. Health. Sci. – 2017. – Vol. 17. – N. 2. – P. 599-602. doi: 10.4314/ahs.v17i2.40.

26. Heifets L. Qualitative and quantitative drug-susceptibility tests in mycobacteriology // Am. Rev. Respir. Dis. – 1988. – Vol. 137. – N. 5. – Р. 1217-1222.

27. Heifets L. Drug susceptibility in the chemotherapy of mycobacterial infections // CRC Press. Boca. Raton. Ann. Arbor. Boston. London. – 2000. – 212 р.

28. Lange C., Chesov D., Heyckendorf J. et al. Drug-resistant tuberculosis: An update on disease burden, diagnosis and treatment // Respirology. – 2018. – Vol. 23. – N. 7. – P. 656-673. doi: 10.1111/resp.13304.

29. Lee J., Armstrong D., Ssengooba W. et al. Sensititre MYCOTB MIC plate for testing Mycobacterium tuberculosis susceptibility to first- and second-line drugs // Antimicrob. Agents. Chemother. – 2014. – Vol. 58. – N. 1. – P. 11-18. doi: 10.1128/AAC.01209-13.

30. Leonard B., Coronel J., Siedner M. et al. Inter- and intra-assay reproducibility of microplate Alamar blue assay results for isoniazid, rifampicin, ethambutol, streptomycin, ciprofloxacin, and capreomycin drug susceptibility testing of Mycobacterium tuberculosis // J. Clin. Microbiol. – 2008. – Vol. 46. – N. 10. – P. 3526-9. doi: 10.1128/ JCM.02083-07.

31. Lynch J. Multidrug-resistant Tuberculosis // Med. Clin. North. Am. – 2013. – Vol. 97. – N. 4. – P. 553-579, ix-x. doi: 10.1016/j.mcna.2013.03.012.

32. Martin I., Dionne K., Deml S., Wengenack N., Parrish N. Automated broth-based systems versus the MYCOTB plate for antimicrobial susceptibility testing of the Mycobacterium tuberculosis complex: challenges in interpretation // Diagn. Microbiol. Infect. Dis. – 2018. – Vol. 91. – N. 1. – P. 38-41. doi: 10.1016/ j.diagmicrobio.2018.01.002.

33. Matteelli A., Roggi A., Carvalho A. Extensively drug-resistant tuberculosis: epidemiology and management // Clin. Epidemiol. – 2014. – Vol. 6. – P. 111-118. doi: 10.2147/CLEP.S35839.

34. Sanders C., Nieda R., Desmond E. Validation of the use of Middlebrook 7H10 agar, BACTEC MGIT 960, and BACTEC 460 12B media for testing the susceptibility of Mycobacterium tuberculosis to levofloxacin // Clin. Microbiol. – 2004. – Vol. 42. – N. 11. – P. 5225-5228.

35. Sharma M., Thibert L., Chedore P. et al. Canadian multicenter laboratory study for standardized second-line antimicrobial susceptibility testing of Mycobacterium tuberculosis // J. Clin. Microbiol. – 2011. – Vol. 49. – N. 12. – P. 4112-4116. doi: 10.1128/JCM.05195-11.

36. Siddiqi S., Ahmed A., Asif S. et al. Direct drug susceptibility testing of Mycobacterium tuberculosis for rapid detection of multidrug resistance using the Bactec MGIT 960 system: a multicenter study // J. Clin. Microbiol. – 2012. – Vol. 50. – N. 2. – P. 435-440. doi: 10.1128/JCM.05188-11.

37. World Health Organization. Technical report on critical concentrations for drug susceptibility testing of medicines used in the treatment of drug-resistant tuberculosis // WHO/CDS/TB/2018.5. Geneva. − 2018.

38. Yamane N., Ichiyama S., Kawahara S. et al. Multicenter evaluation of broth microdilution test, BrothMIC MTB, to determine minimum inhibitory concentrations (MICs) of antimicrobial agents for Mycobacterium tuberculosis – evaluation of interlaboratory precision and interpretive compatibility with agar proportion method // Rinsho. Byori. – 1999. – Vol. 47. – N. 8. – P. 754-766.

39. Zignol M., Dara M., Dean A. et al. Drug-resistant tuberculosis in the WHO European Region: an analysis of surveillance data // Drug. Resist. Updat. – 2013. – Vol. 16. – N. 6. –108-115. doi: 10.1016/j.drup.2014.02.003.