Preview

Туберкулез и социально значимые заболевания

Расширенный поиск

Молекулярные тест-системы гибридизационного анализа в диагностике лекарственной чувствительности M. tuberculosis к фторхинолонам и инъекционным препаратам

https://doi.org/10.54921/2413-0346-2023-11-4-30-38

Аннотация

В работе представлены данные тестирования лекарственной чувствительности (ЛЧ) клинических изолятов M. tuberculosis к фторхинолонам и инъекционным препаратам с помощью молекулярно-генетических тест-систем и фенотипических методов. Показаны диагностические возможности гибридизационных технологий «ТБ-ТЕСТ» и GenoType MTBDRsl v.2 в определении генетических детерминант устойчивости изолятов с множественной, пре-широкой и широкой лекарственной устойчивостью.

Об авторах

А. И. Исакова
ГБУЗ «Московский городской научно-практический центр борьбы с туберкулезом Департамента здравоохранения города Москвы»
Россия

Исакова Александра Ивановна – врач клинической лабораторной диагностики Централизованной бактериологической лаборатории

107014, Москва, ул. Стромынка, д. 10



Ю. Д. Михайлова
ГБУЗ «Московский городской научно-практический центр борьбы с туберкулезом Департамента здравоохранения города Москвы»
Россия

Михайлова Юлия Дмитриевна – ведущий научный сотрудник отдела проблем лабораторной диагностики туберкулеза и патоморфологии, кандидат биологических наук

107014, Москва, ул. Стромынка, д. 10



М. А. Свириденко
ГБУЗ «Московский городской научно-практический центр борьбы с туберкулезом Департамента здравоохранения города Москвы»
Россия

Свириденко Мария Александровна – ведущий научный сотрудник отдела проблем лабораторной диагностики туберкулеза и патоморфологии, кандидат медицинских наук

107014, Москва, ул. Стромынка, д. 10



А. А. Хахалина
ГБУЗ «Московский городской научно-практический центр борьбы с туберкулезом Департамента здравоохранения города Москвы»
Россия

Хахалина Анастасия Александровна – ведущий научный сотрудник отдела проблем лабораторной диагностики туберкулеза и патоморфологии, кандидат биологических наук

107014, Москва, ул. Стромынка, д. 10



К. Ю. Галкина
ГБУЗ «Московский городской научно-практический центр борьбы с туберкулезом Департамента здравоохранения города Москвы»
Россия

Галкина Ксения Юрьевна – ведущий научный сотрудник отдела проблем лабораторной диагностики туберкулеза и патоморфологии, кандидат биологических наук

107014, Москва, ул. Стромынка, д. 10



Е. Ю. Носова
ГБУЗ «Московский городской научно-практический центр борьбы с туберкулезом Департамента здравоохранения города Москвы»
Россия

Носова Елена Юрьевна – ведущий научный сотрудник отдела проблем лабораторной диагностики туберкулеза и патоморфологии, доктор медицинских наук

107014, Москва, ул. Стромынка, д. 10



С. Г. Сафонова
ГБУЗ «Московский городской научно-практический центр борьбы с туберкулезом Департамента здравоохранения города Москвы»
Россия

Сафонова Светлана Григорьевна – заведующая отделом проблем лабораторной диагностики туберкулеза и патоморфологии, доктор биологических наук 

107014, Москва, ул. Стромынка, д. 10



Список литературы

1. Мирзабеков А.Д. Биочипы в биологии и медицине XXΙ века // Вестник РАН. – 2003. – Т. 73. – № 5. – С. 412.

2. Приказ № 951 Минздрава России от 29 декабря 2014 г. «Об утверждении методических рекомендаций по совершенствованию диагностики и лечения органов дыхания». – М., 2014. – 41 с.

3. Руководство по интерпретации и отчетности для лабораторного персонала и врачей. Тесты молекулярной гибридизации с типоспецифическими зондами для выявления лекарственно-устойчивого туберкулеза // www.stoptb.org/wg/gli

4. Ajileye A., Alvarez N., Merker M et al. Some synonymous and nonsynonymous gyrA mutations in Mycobacterium tuberculosis lead to systematic falsepositive fluoroquinolone resistance results with the Hain GenoType MTBDRsl Assays // Antimicrob. Agents Chemother. – 2017. – Vol. 61, № 4. – e02169-16.

5. Aubry A., Veziris N., Cambau E. et al. Novel gyrAse mutations in quinolone-resistant and-hypersusceptible clinical isolates of Mycobacterium tuberculosis: functional analysis of mutant enzymes // Antimicrob. Agents Chemother. – 2006. – Vol. 50. – P. 104-112.

6. Brossier F., Guindo D., Pham A. et al. Performance of the new version (v. 2.0) of the GenoType MTBDRsl test for detection of resistance to second-line drugs in multidrug-resistant Mycobacterium tuberculosis complex strains // J. Clin. Microbiol. – 2016. – Vol. 54. – P. 1573-1580.

7. Chakravorty S., Lee J.S., Cho E.J/ et al. Genotypic susceptibility testing of Mycobacterium tuberculosis isolates for amikacin and kanamycin resistance by use of a rapid sloppy molecular beacon-based assay identifies more cases of low-level drug resistance than phenotypic Lowenstein-Jensen testing // J. Clin. Microbiol. – 2015. – Vol. 53, № 1. – Р. 43-51.

8. Coeck N., Jong B.C., Diels M. et al. Correlation of different phenotypic drug susceptibility testing methods for four fluoroquinolones in Mycobacterium tuberculosis // J. Antimicrob. Chemother. – 2016. – Vol. 71, № 5. – P. 1233-1240.

9. Gardee Y., Dreyer A.W., Koornhof H.J. et al. Evaluation of the GenoType MTBDRsl version 2.0 Assay for second-line drug resistance detection of Mycobacterium tuberculosis isolates in South Africa / J. Clin. Microbiol. – 2017. – Vol. 55. – P. 791-800.

10. Georghiou S.B., Magana M., Garfein R.S. et al. Evaluation of genetic mutations associated with Mycobacterium tuberculosis resistance to amikacin, kanamycin and capreomycin: a systematic review // PLoS One. – 2012. – Vol. 7, № 3. – e33275.

11. Hillemann D., Rüsch-Gerdes S., Richter E. Feasibility of the Geno Type® MTBDRsl Assay for fluoroquinolone, amikacin/capreomycin, and ethambutol resistance testing of Mycobacterium tuberculosis strains and in clinical specimens // J. Clin. Microbiol. – 2009. – Vol. 47. – P. 1767-1772.

12. Kambli P., Ajbani K., Nikam C. et al. Correlating rrs and eis promoter mutations in clinical isolates of Mycobacterium tuberculosis with phenotypic susceptibility levels to the second-line injectables // Int. J. Mycobacteriol. – 2016. – Vol. 5, № 1. – P. 1-6.

13. Lasunskaia E., Ribeiro S.C., Manicheva O. et al. Emerging multidrug resistant Mycobacterium tuberculosis strains of the Beijing genotype circulating in Russia express a pattern of biological properties associated with enhanced virulence // Microbes Infect. – 2010. – Vol. 12, № 6. – P. 467-475.

14. Ling D.I., Zwerling A.A., Pai M. Rapid diagnosis of drug-resistant TB using line probe assays: from evidence to policy // Expert Rev. Respir. Med. – 2008. – Vol. 2. – P. 583-588. Magnet S., Blanchard J.S. Molecular insights into aminoglycoside action and resistance // Chem. Rev. – 2005. – Vol. 105, № 2. – P. 477-498.

15. Malik S., Willby M., Sikes D. et al. New insights into fluoroquinolone resistance in Mycobacterium tuberculosis: functional genetic analysis of gyrA and gyrB mutations // PLoS One. – 2012. – Vol. 7, № 6. – e39754.

16. Maus C.E., Plikaytis B.B., Shinnick T.M. Molecular analysis of cross-resistance to capreomycin, kanamycin, amikacin, and viomycin in Mycobacterium tuberculosis // Antimicrob. Agents Chemother. – 2005. – Vol. 49, № 8. – P. 3192-3197.

17. Miotto P., Tessema B., Tagliani E. et al. A standardised method for interpreting the association between mutations and phenotypic drug resistance in Mycobacterium tuberculosis // Eur. Respir. J. – 2017. – Vol. 50, № 6. – 1701354.

18. Narvskaya O., Otten T., Limeschenko E. et al. Nosocomial outbreak of multidrug-resistant tuberculosis caused by a strain of Mycobacterium tuberculosis W-Beijing family in St. Petersburg, Russia // Eur. J. Clin. Microbiol. Infect. Dis. – 2002. – Vol. 21, № 8. – P. 596-602.

19. Reeves A.Z., Campbell P.J., Sultana R. et al. Aminoglycoside cross-resistance in Mycobacterium tuberculosis due to mutations in the 5‘ untranslated region of whiB7 //Antimicrob. Agents Chemother. – 2013. – Vol. 57, № 4. – P. 1857-1865.

20. Schön T., Miotto P., Köser C.U. et al. Mycobacterium tuberculosis drug resistance testing: challenges, recent developments and perspectives // Clin. Microbiol. Infect. – 2017. – Vol. 23, № 3. – P. 154-160.

21. Siddiqi S. H., Rusch-Gerdes S., Alexander H. et al. MGIT Procedure Manual for BACTECТМMGITТМ960 TB System (Also applicable for Manual MGIT) – 2006. [Электронный ресурс] https://www.finddx.org/wp-content/uploads/2016/02/mgit_manual_nov2006.pdf (Дата обращения 20.09.2022).

22. Takiff H., Salazar L., Guerrero C. et al. Cloning and nucleotide sequence of Mycobacterium tuberculosis gyrA and gyrB genes and detection of quinolone resistance mutations // Antimicrob. Agents Chemother. – 1994. – Vol. 38, № 4. – P. 773-780.

23. Wang J.-Y., Lee L.-N., Lai H.-C. et al. Fluoroquinolone resistance in Mycobacterium tuberculosis isolates: associated genetic mutations and relationship to antimicrobial exposure // J. Antimicrob. Chemother. – 2007. – Vol. 59, № 5. – P. 860-865.

24. World Health Organization. The use of molecular line probe assays for the detection of resistance to second-line antituberculosis drugs. Policy guidance. – WHO.: Geneva, Switzerland, 2016. – 52 p.

25. World Health Organization. Policy guidance on drug-susceptibility testing (DST) of second-line antituberculosis drugs [Электронный ресурс]. – 2008. – Режим доступа: https://apps.who.int/iris/bitstream/handle/10665/70500/WHO_HTM_TB_2008.392_eng.pdf?sequence=1

26. Zaunbrecher M.A., Sikes Jr. R.D., Metchock B. et al. Overexpression of the chromosomally encoded aminoglycoside acetyltransferase eis confers kanamycin resistance in Mycobacterium tuberculosis // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. – 2009. – Vol. 106, № 47. – P. 20004-20009.

27. Zhang Z., Liu M., Wang Y. et al. Molecular and phenotypic characterization of multidrug-resistant Mycobacterium tuberculosis isolates resistant to kanamycin, amikacin, and capreomycin in China // Eur. J. Clin. Microbiol. Infect. Dis. – 2014. – Vol. 33, № 11. – P. 1959-1966.

28. Zimenkov D.V., Kulagina E.V., Antonova O.V. et al. Simultaneous drug resistance detection and genotyping of Mycobacterium tuberculosis using a low-density hydrogel microarray // J. Antimicrob. Chemother. – 2016. – Vol. 71, № 6. – P. 1520-1531.


Рецензия

Для цитирования:


Исакова А.И., Михайлова Ю.Д., Свириденко М.А., Хахалина А.А., Галкина К.Ю., Носова Е.Ю., Сафонова С.Г. Молекулярные тест-системы гибридизационного анализа в диагностике лекарственной чувствительности M. tuberculosis к фторхинолонам и инъекционным препаратам. Туберкулез и социально значимые заболевания. 2023;11(4):30-38. https://doi.org/10.54921/2413-0346-2023-11-4-30-38

For citation:


Isakova A.I., Mikhailova Yu.D., Sviridenko M.A., Khakhalina A.A., Galkina K.Yu., Nosova E.Yu., Safonova S.G. Molecular tests for hybridization analysis in the diagnosis of drug susceptibility of M. Tuberculosis to fluoroquinolones and injectable drugs. Tuberculosis and socially significant diseases. 2023;11(4):30-38. (In Russ.) https://doi.org/10.54921/2413-0346-2023-11-4-30-38

Просмотров: 83


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 2413-0346 (Print)
ISSN 2413-0354 (Online)