Активность бедаквилина в отношении микобактерий (обзор литературы)
https://doi.org/10.54921/2413-0346-2024-12-3-59-69
Аннотация
Устойчивость M. tuberculosis к противотуберкулезным препаратам (ПТП), а также к антибактериальным препаратам, первоначально разработанным для других целей, но эффективным в отношении M. tuberculosis, − чрезвычайно серьезная проблема. Лечение туберкулеза с лекарственной устойчивостью возбудителя является сложным, оно значительно дороже, а эффективность его ниже, чем при лечении лекарственно-чувствительного туберкулеза. С появлением новых противотуберкулезных препаратов, таких как бедаквилин и деламанид, эффективность этиотропной химиотерапии туберкулеза с МЛУ и ШЛУ возбудителя значительно увеличилась.
В обзоре показано, что бедаквилин обладает высокой активностью in vitro в отношении как M. tuberculosis, так и нетуберкулезных микобактерий. Однако в отдельных случаях обнаруживаются штаммы с природной устойчивостью к этому препарату. Имеются также данные о развитии приобретенной устойчивости к бедаквилину. Это указывает на необходимость рационального (по показаниям, в соответствии с разработанными оптимальными дозировками и схемами) применения бедаквилина при лечении туберкулеза и микобактериозов.
Об авторах
М. В. Макарова
ГБУЗ «Московский городской научно-практический центр борьбы с туберкулезом Департамента здравоохранения города Москвы»
Россия
Россия
Макарова Марина Витальевна – главный научный сотрудник отдела проблем лабораторной диагностики туберкулеза и патоморфологии, доктор биологических наук
107014, г. Москва, ул. Стромынка, д. 10, стр. 1
Тел. +7 (916) 688-98-25
И. В. Перетокина
ГБУЗ «Московский городской научно-практический центр борьбы с туберкулезом Департамента здравоохранения города Москвы»
Россия
Россия
Перетокина Ирина Витальевна – врач-бактериолог Централизованной бактериологической лаборатории
107014, г. Москва, ул. Стромынка, д. 10, стр. 1
Тел. + 7 (499) 268-70-33
С. Г. Сафонова
ГБУЗ «Московский городской научно-практический центр борьбы с туберкулезом Департамента здравоохранения города Москвы»
Россия
Россия
Сафонова Светлана Григорьевна – заведующая отделом проблем лабораторной диагностики туберкулеза и патоморфологии, доктор биологических наук
107014, г. Москва, ул. Стромынка, д. 10, стр. 1
Тел. +7 (499) 268-08-76
В. И. Литвинов
ГБУЗ «Московский городской научно-практический центр борьбы с туберкулезом Департамента здравоохранения города Москвы»
Россия
Россия
Литвинов Виталий Ильич – научный руководитель, профессор, академик РАН
107014, г. Москва, ул. Стромынка, д. 10, стр. 1
Тел. +7 (499) 268-04-15
Список литературы
1. Богородская Е.М., Кудлай Д.А., Литвинов В.И. Проблемы лекарственной устойчивости микобактерий. – М.: МНПЦБТ, 2021. – 504c.
2. Борисов С.Е., Иванушкина Т.Н., Иванова Д.А. и др. Эффективность и безопасность включающих бедаквилин шестимесячных режимов химиотерапии у больных туберкулезом органов дыхания // Туберкулез и социально значимые заболевания. – 2015. – № 3. – С. 30-49. 3. Васильева И.А., Самойлова А.Г., Ловачева О.В. и др. Влияние разных противотуберкулезных и антибактериальных препаратов на эффективность лечения больных туберкулезом с множественной лекарственной устойчивостью // Туберкулез и болезни легких. – 2017.–
3. Т. 95. – № 10. – С. 9-16.
4. Макарова М.В., Михайлова Ю.Д., Свириденко М.А. и др. Изучение активности бедаквилина in vitro в отношении Mycobacterium fortuitum complex // Туберкулез и социально значимые заболевания. – 2024. – Т. 12. – № 1. – С. 30-35.
5. Макарова М.В., Михайлова Ю.Д., Хачатурьянц Е.Н., Литвинов В.И. Изучение лекарственной чувствительности к бедаквилину быстрорастущих микобактерий комплекса M. chelonae – M. abscessus // Туберкулез и социально значимые заболевания. – 2022. – Т. 10. – № 4. – С. 42-49.
6. Макарова М.В., Михайлова Ю.Д., Хачатурьянц Е.Н., Литвинов В.И. Лекарственная чувствительность к бедаквилину штаммов M. kansasii, выделенных в противотуберкулезных учреждениях Москвы // Эпидемиология и вакцинопрофилактика. – 2023. – Т. 22. – № 3. – С. 64-69.
7. Перетокина И.В., Крылова Л.Ю., Михайлова Ю.Д. и др. Определение минимальных ингибирующих концентраций бедаквилина для оценки лекарственной чувствительности микобактерий туберкулеза // Туберкулез и болезни легких. – 2019. – Т. 97. – № 6. – С. 64-65.
8. Перетокина И.В., Крылова Л.Ю., Сафонова С.Г. др. Определение пограничного значения минимальной ингибирующей концентрации бедаквилина в отношении чувствительных клинических штаммов Mycobacterium tuberculosis на разных питательных средах // Туберкулез и социально значимые заболевания. – 2018. – № 3. – С. 32-35.
9. Abate G., Stapleton J., Rouphael N. et al. Variability in the management of adults with pulmonary nontuberculous mycobacterial disease // Clin. Infect. Dis. – 2021. – Vol. 72, № 7. – P. 1127-1137. doi: 10.1093/cid/ciaa252.
10. Aguilar-Ayala D., Cnockaert M., André E. et al. In vitro activity of bedaquiline against rapidly growing nontuberculous mycobacteria // J. Med. Microbiol. – 2017. – Vol. 66. – P. 1140-1143. 10.1099/jmm.0.000537.
11. Asami T., Aono A., Chikamatsu K. et al. Efficacy estimation of a combination of triple antimicrobial agents against clinical isolates of Mycobacterium abscessus subsp. abscessus in vitro // JAC Antimicrob. Resist. – 2021. – Vol. 3, № 1. – dlab004. doi: 10.1093/jacamr/dlab004.
12. Brown-Elliott B., Philley J., Griffith D. et al. In vitro susceptibility testing of bedaquiline against Mycobacterium avium complex // Antimicrob. Agents Chemother. – 2017. – Vol. 61. – e01798-16. 10.1128/AAC.01798-16.
13. Brown-Elliott B., Wallace R. In vitro susceptibility testing of bedaquiline against Mycobacterium abscessus complex // Antimicrob. Agents Chemother. – 2019. – Vol. 63, № 2. – e01919-18. doi: 10.1128/AAC.01919-18.
14. Chew K.L., Octavia S., Go J. et al. In vitro susceptibility of Mycobacterium abscessus complex and feasibility of standardizing treatment regimens // J. Antimicrob. Chemother. – 2021. – Vol. 76, № 4. – P. 973-978. doi: 10.1093/jac/dkaa520.
15. Daley C.L., Iaccarino J.M., Lange C. et al. Treatment of nontuberculous mycobacterial pulmonary disease: an official ATS/ERS/ESCMID/IDSA clinical practice guideline // Clin. Infect. Dis. – 2020. – Vol. 71, № 4. – P. 905-913. doi: 10.1093/cid/ciaa1125.
16. Dupont C., Viljoen A., Thomas S. et al. Bedaquiline inhibits the ATP synthase in Mycobacterium abscessus and is effective in infected zebrafish // Antimicrob. Agents Chemother. – 2017. – Vol. 61, № 11. – e01225-17. doi: 10.1128/AAC.01225-17.
17. Gao T., Yao C., Shang Y. et al. Antimicrobial effect of oxazolidinones and its synergistic effect with bedaquiline against Mycobacterium abscessus complex // Infect. Drug Resist. – 2023. – Vol. 16. – P. 279-287. doi: 10.2147/IDR.S395750.
18. Guo Y., Yang J., Wang W. et al. Bedaquiline, delamanid, linezolid, clofazimine and capreomycin MIC distributions for drug resistance Mycobacterium tuberculosis in Shanghai, China // Infect. Drug Resist. – 2023. – Vol. 16. – P. 7587-7595. doi: 10.2147/IDR.S440711. PMID: 38107433; PMCID: PMC10723587.
19. Huitric E., Verhasselt P., Koul A. et al. Rates and mechanisms of resistance development in Mycobacterium tuberculosis to a novel diarylquinoline ATP synthase inhibitor // Antimicrob. Agents Chemother. – 2010. – Vol. 54, № 3. – P. 1022-1028. doi: 10.1128/AAC.01611-09.
20. Ismail N., Rivière E., Limberis J. et al. Genetic variants and their association with phenotypic resistance to bedaquiline in Mycobacterium tuberculosis: a systematic review and individual isolate data analysis // Lancet Microbe. – 2021. – Vol. 2, № 11. – e604-e616. doi: 10.1016/s2666-5247(21)00175-0.
21. Kaniga K., Hasan R., Jou R. et al. Bedaquiline drug resistance emergence assessment in multidrug-resistant tuberculosis (MDR-TB): a 5-year prospective in vitro surveillance study of bedaquiline and other second-line drug susceptibility testing in MDR-TB isolates // J. Clin. Microbiol. – 2022. – Vol. 60, № 1. – e0291920. doi: 10.1128/JCM.02919-20.
22. Kim D.H., Jhun B.W., Moon S.M. et al. In vitro activity of bedaquiline and delamanid against nontuberculous mycobacteria, including macrolide-resistant clinical isolates // Antimicrob. Agents Chemother. – 2019. – Vol. 63, № 8. – e00665-19. doi: 10.1128/AAC.00665-19.
23. Li B., Ye M., Guo Q. et al. Determination of MIC Distribution and mechanisms of decreased susceptibility to bedaquiline among clinical isolates of Mycobacterium abscessus // Antimicrob. Agents Chemother. – 2018. – Vol. 62, № 7. – e00175-18. doi: 10.1128/AAC.00175-18.
24. Lin S., Hua W., Wang S. et al. In vitro assessment of 17 antimicrobial agents against clinical Mycobacterium avium complex isolates // BMC Microbiol. – 2022. – Vol. 22, № 1. – P. 175. doi: 10.1186/s12866-022-02582-2. PMID: 35804298; PMCID: PMC9264595.
25. Litvinov V., Makarova M., Kudlay D. et al. In vitro activity of bedaquiline against Mycobacterium avium complex // J. Med. Microbiol. – 2021. – Vol. 70, № 10. doi: 10.1099/jmm.0.001439.
26. Martin A., Godino I.T., Aguilar-Ayala D.A. et al. In vitro activity of bedaquiline against slow-growing nontuberculous mycobacteria // J. Med. Microbiol. – 2019. – Vol. 68, № 8. – P. 1137-1139. doi: 10.1099/jmm.0.001025.
27. Omar S., Whitfield M.G., Nolan M.B. et al. Bedaquiline for treatment of non-tuberculous mycobacteria (NTM): a systematic review and meta-analysis // J. Antimicrob. Chemother. – 2024. – Vol. 79, № 2. – P. 211-240. doi: 10.1093/jac/dkad372.
28. Pang Y., Zheng H., Tan Y. et al. In vitro activity of bedaquiline against nontuberculous mycobacteria in China // Antimicrob. Agents Chemother. – 2017. – Vol. 61, № 5. – e02627-16. doi: 10.1128/AAC.02627-16.
29. Schulthess B., Akdoğan Kittana F.N., Hömke R., Sander P. In vitro bedaquiline and clofazimine susceptibility testing in Mycobacterium abscessus // Antimicrob. Agents Chemother. – 2022. – Vol. 66, № 5. – e0234621. doi: 10.1128/aac.02346-21.
30. Soni I., De Groote M.A., Dasgupta A., Chopra S. Challenges facing the drug discovery pipeline for non-tuberculous mycobacteria // J. Med. Microbiol. – 2016. – Vol. 65, № 1. P. 1-8. doi: 10.1099/ jmm.0.000198.
31. Sorayah R., Manimekalai M.S.S., Shin S.J. et al. Naturally-occurring polymorphisms in QcrB are responsible for resistance to telacebec in Mycobacterium abscessus // ACS Infect. Dis. – 2019. – Vol. 5, № 12. – P. 2055-2060. doi: 10.1021/acsinfecdis.9b00322.
32. Vesenbeckh S., Schönfeld N., Krieger D. et al. Bedaquiline as a potential agent in the treatment of M. intracellulare and M. avium infections // Eur. Respir. J. – 2017. – Vol. 49, № 3. – P. 1601969. doi: 10.1183/13993003.01969-2016.
33. Vesenbeckh S., Schönfeld N., Roth A. et al. Bedaquiline as a potential agent in the treatment of Mycobacterium abscessus infections // Eur. Respir. J. – 2017. – Vol. 49, № 5. – P. 1700083. doi: 10.1183/13993003.00083-2017.
34. Viljoen A., Raynaud C., Johansen M.D. et al. Verapamil improves the activity of bedaquiline against Mycobacterium abscessus in vitro and in macrophages // Antimicrob. Agents Chemother. – 2019. – Vol. 63, № 9. – e00705-19. doi: 10.1128/AAC.00705-19.
35. Wang M., Men P., Zhang W. et al. Bedaquiline susceptibility testing of Mycobacterium abscessus complex and Mycobacterium avium complex: a meta-analysis study // J. Glob. Antimicrob. Resist. – 2024. – Vol. 37. – P. 135-140. doi: 10.1016/j.jgar. 2024.03.009.
36. Wetzstein N., Geil A., Kann G. et al. Disseminated disease due to non-tuberculous mycobacteria in HIV positive patients: a retrospective case control study // PLoS One. – 2021. – Vol. 16, № 7. – e0254607. doi: 10.1371/journal.pone.0254607.
37. WHO consolidated guidelines on tuberculosis: Module 4: treatment – drug-resistant tuberculosis treatment, 2022 update [Internet]. – Geneva: World Health Organization, 2022.
38. Ying R., Yang J., Wu X. et al. Antimicrobial susceptibility testing using the MYCO Test System and MIC distribution of 8 drugs against clinical isolates of nontuberculous mycobacteria from Shanghai // Microbiol. Spectr. – 2023. – Vol. 11, № 2. – e0254922. doi: 10.1128/spectrum.02549-22.
39. Yu X., Gao X., Li C. et al. In vitro activities of bedaquiline and delamanid against nontuberculous mycobacteria isolated in Beijing, China // Antimicrob. Agents Chemother. – 2019. – Vol. 63, № 8. – e00031-19. doi: 10.1128/AAC.00031-19.
40. Zheng L., Qi X., Zhang W. et al. Efficacy of PBTZ169 and pretomanid against Mycobacterium avium, Mycobacterium abscessus, Mycobacterium chelonae and Mycobacterium fortuitum in BALB/c mice models // Front. Cell. Infect. Microbiol. – 2023. – Vol. 13. – 1115530. doi: 10.3389/fcimb.2023.1115530.
41. Zhu R., Shang Y., Chen S. et al. In vitro activity of the sudapyridine (WX-081) against non-tuberculous mycobacteria isolated in Beijing, China // Microbiol. Spectr. – 2022. – Vol. 10, № 6. – e0137222. doi: 10.1128/spectrum.01372-22.
Рецензия
Для цитирования:
Макарова М.В., Перетокина И.В., Сафонова С.Г., Литвинов В.И. Активность бедаквилина в отношении микобактерий (обзор литературы). Туберкулез и социально значимые заболевания. 2024;12(3):59-69. https://doi.org/10.54921/2413-0346-2024-12-3-59-69
For citation:
Litvinov I.V., Safonova S.G., Peretokina I.V., Litvinov M.V. Activity of bedaquiline against mycobacteria (review). Tuberculosis and socially significant diseases. 2024;12(3):59-69. (In Russ.) https://doi.org/10.54921/2413-0346-2024-12-3-59-69
Просмотров:
192
Послать статью по эл. почте 