Молекулярные механизмы развития широкой лекарственной устойчивости и методы ее определения у M.tuberculosis.
Аннотация
В условиях повсеместного распространения лекарственно-устойчивых штаммов M. tuberculosis необходимо четкое понимание молекулярных основ развития устойчивости возбудителя к различным группам противотуберкулёзных препаратов. Устойчивость M. tuberculosis к фторхинолонам, как правило, вызвана различными мутациями в генах gyrA и gyrB, преимущественно в QRDR области. Устойчивость M. tuberculosis к аминогликозидам/капреомицину может быть связана с мутациями в гене rrs, промоторной области гена eis, а в редких случаях в гене tlyA. В клинической практике для выявления мутаций, связанных с устойчивостью M. tuberculosis к фторхинолонам и аминогликозидам/капреомицину могут быть использованы тест-системы ТБ-БИОЧИП2 (только для фторхинолонов) и GenoType MTBDRsl.
Об авторах
Е. Ю. Носова
ГКУЗ «Московский городской научно-практический центр борьбы с туберкулёзом Департамента здравоохранения города Москвы»
Россия
Россия
Носова Елена Юрьевна – ведущий научный сотрудник отдела проблем лабораторной диагностики туберкулёза и патоморфологии ГКУЗ «Московский городской научно-практический центр борьбы с туберкулёзом Департамента здравоохранения города Москвы», кандидат медицинских наук
107014, г. Москва, ул. Стромынка, д. 10
Тел.: +7 (496) 603 30 33
М. Б. Гикало
ГКУЗ «Московский городской научно-практический центр борьбы с туберкулёзом Департамента здравоохранения города Москвы»
Россия
Россия
Гикало Марина Борисовна – научный сотрудник отдела проблем лабораторной диагностики туберкулёза и патоморфологии ГКУЗ «Московский городской научно-практический центр борьбы с туберкулёзом Департамента здравоохранения города Москвы»
107014, г. Москва, ул. Стромынка, д. 10
Тел.: +7 (496) 603 30 33
А. А. Хахалина
ГКУЗ «Московский городской научно-практический центр борьбы с туберкулёзом Департамента здравоохранения города Москвы»
Россия
Россия
Хахалина Анастасия Александровна – научный сотрудник отдела проблем лабораторной диагностики туберкулёза и патоморфологии ГКУЗ «Московский городской научно-практический центр борьбы с туберкулёзом Департамента здравоохранения города Москвы»
107014, г. Москва, ул. Стромынка, д. 10
Тел.: +7 (496) 603 30 33
К. Ю. Галкина
ГКУЗ «Московский городской научно-практический центр борьбы с туберкулёзом Департамента здравоохранения города Москвы»
Россия
Россия
Галкина Ксения Юрьевна – ведущий научный сотрудник отдела проблем лабораторной диагностики туберкулёза и патоморфологии ГКУЗ «Московский городской научно-практический центр борьбы с туберкулёзом Департамента здравоохранения города Москвы», кандидат биологических наук
107014, г. Москва, ул. Стромынка, д. 10
Тел.: +7 (496) 603 30 33
С. Г. Сафонова
ГКУЗ «Московский городской научно-практический центр борьбы с туберкулёзом Департамента здравоохранения города Москвы»
Россия
Россия
Сафонова Светлана Григорьевна – заведующая отделом проблем лабораторной диагностики туберкулёза и патоморфологии ГКУЗ «Московский городской научно-практический центр борьбы с туберкулёзом Департамента здравоохранения города Москвы», доктор биологических наук
107014, г. Москва, ул. Стромынка, д. 10
Тел.: +7 (496) 603 30 33
Список литературы
1. Сон И.М., Стерликов С.А., Скачкова Е.И. и др. Выявление микобактерий туберкулёза и определение лекарственной чувствительности с использованием биологических чипов.– М.: РИО ЦНИИОИЗ. – 2009. – 52 с.
2. Brossier F., Veziris N., Aubry A., et al. Detection by Genotype MTBDRsl test of complex resistance mechanisms to second-line drugs and ethambutol in multidrug-resistant Mycobacterium tuberculosis complex isolates // J. Clin. Microbiol. – 2010. – Vol. 48. – P. 1683–1689.
3. Campbell P., Morlock G., Sikes R. et al. Molecular detection of mutations associated with first- and second-line drug resistance compared with conventional drug susceptibility testing of Mycobacterium tuberculosis // Antimicrob. Agents Chemother. – 2011. – Vol. 55– P. 2032-2041.
4. Chan R., Hui M., Chan E. et al. Genetic and phenotypic characterization of drug-resistant Mycobacterium tuberculosis isolates in Hong Kong // J. Antimicrob. Chemother. – 2007. – Vol. 59. – P. 866–673.
5. Conde M., Efron A., Loredo C. et al. Moxifloxacin versus ethambutol in the initial treatment of tuberculosis: a double-blind, randomised, controlled phase II trial // Lancet. – 2009. – Vol. 373. – N. 9670. – P. 1183-1189.
6. Cui Z., Wang J., Lu J. et al. Association of mutation patterns in gyrA/B genes and ofloxacin resistance levels in Mycobacterium tuberculosis isolates from East China in 2009 // BMC Infect. Dis. – 2011. – 11:78.
7. Duong D., Nguyen T., Nguyen T. et al. Beijing genotype of Mycobacterium tuberculosis is significantly associated with high-level fluoroquinolone resistance in Vietnam // Antimicrob. Agents Chemother. – 2009. – Vol. 53. – P. 4835-4839.
8. El Sahly H., Teeter L., Jost K. et al. Incidence of moxifloxacin resistance in clinical Mycobacterium tuberculosis isolates in Houston, Texas // J. Clin. Microbiol. – 2011. – Vol. 49. – P. 2942-2945.
9. Engström A., Perskvist N., Werngren J. et al. Comparison of clinical isolates and in vitro selected mutants reveals that tlyA is not a sensitive genetic marker for capreomycin resistance in Mycobacterium tuberculosis // J. Antimicrob. Chemother. – 2011. – Vol. 66. – P. 1247-1254.
10. Feuerriegel S., Cox H., Zarkua N. et al. Sequence analyses of just four genes to detect extensively drug-resistant Mycobacterium tuberculosis strains in multidrug-resistant tuberculosis patients undergoing treatment // Antimicrob. Agents Chemother. – 2009. – Vol. 53. – P. 3353-3356.
11. Gikalo M., Nosova E., Krylova L., Moroz A. The role of eis mutations in the development of kanamycin resistance in Mycobacterium tuberculosis isolates from the Moscow region // J. Antimicrob. Chemother. – 2012. – Vol. 67. – P. 2107-2109.
12. Ginsburg A., Grosset J., Bishai W. Fluoroquinolones, tuberculosis, and resistance // Lancet Infect. Dis. – 2003. – Vol. 3. – P. 432-442.
13. Hegde S., Vetting M., Roderick S. et al. A fluoroquinolone resistance protein from Mycobacterium tuberculosis that mimics DNA // Science. – 2005. – Vol. 308. – N. 5727. – P. 1480-1483.
14. Hillemann D., Rusch-Gerdes S., Richter E. Feasibility of the GenoType MTBDRsl assay for fluoroquinolone, amikacin-capreomycin, and ethambutol resistance testing of Mycobacterium tuberculosis strains and clinical specimens // J. Clin. Microbiol. – 2009. – Vol. 47. – P. 1767-1772.
15. Ji Y., Colston M., Cox R. The ribosomal RNA (rrn) operons of fast-growing mycobacteria: primary and secondary structures and their relation to rrn operons of pathogenic slow-growers // Microbiology. – 1994. – Vol. 140. – P. 2829-2840.
16. Jnawali H., Yoo H., Ryoo S. et al. Molecular genetics of Mycobacterium tuberculosis resistant to aminoglycosides and cyclic peptide capreomycin antibiotics in Korea // World J. Microbiol. Biotechnol. – 2013. – Vol. 29. – P. 975-982.
17. Kam K., Yip C., Cheung T. et al. Stepwise decrease in moxifloxacin susceptibility amongst clinical isolates of multidrug-resistant Mycobacterium tuberculosis: correlation with ofloxacin susceptibility // Microb. Drug Resist. – 2006. – Vol. 12. – P. 7-11.
18. Kim D., Kim H., Park S. et al. Treatment outcomes and long-term survival in patients with extensively drug-resistant tuberculosis // Am. J. Respir. Crit. Care Med. – 2008. – Vol.178. – P. 1075-1082.
19. Krüüner A., Jureen P., Levina K. et al. Discordant resistance to kanamycin and amikacin in drug-resistant Mycobacterium tuberculosis // Antimicrob. Agents Chemother. – 2003. – Vol. 47. – P. 2971-2973.
20. Malik M., Zhao X., Drlica K. Lethal fragmentation of bacterial chromosomes mediated by DNA gyrase and quinolones // Mol. Microbiol. – 2006. – Vol. 61. – P. 810-825.
21. Malik S., Willby M., Sikes D. et al. New insights into fluoroquinolone resistance in Mycobacterium tuberculosis: functional genetic analysis of gyrA and gyrB mutations // PLoS One. – 2012. – Vol. 7. – e39754.
22. Maruri F., Sterling T., Kaiga A. et al. A systematic review of gyrase mutations associated with fluoroquinolone-resistant Mycobacterium tuberculosis and a proposed gyrase numbering system // J. Antimicrob. Chemother. – 2012. – Vol. 67. – P. 819-831.
23. Matrat S., Veziris N., Mayer C. et al. Functional analysis of DNA gyrase mutant enzymes carrying mutations at position 88 in the A subunit found in clinical strains of Mycobacterium tuberculosis resistant to fluoroquinolones // Antimicrob. Agents Chemother. – 2006. – Vol. 50. – P. 4170-4173.
24. Maus C., Plikaytis B., Shinnick T. Mutation of tlyA confers capreomycin resistance in Mycobacterium tuberculosis // Antimicrob. Agents Chemother. – 2005. – Vol. 49. – P. 571-577.
25. Mokrousov I., Otten T., Manicheva O. et al. Molecular characterization of ofloxacin-resistant Mycobacterium tuberculosis strains from Russia //Antimicrob. Agents Chemother. – 2008. – Vol. 52. – P. 2937-2939.
26. Nosova E., Bukatina A., Isaeva Yu. et al. Analysis of mutations in the gyrA and gyrB genes and their association with the resistance of Mycobacterium tuberculosis to levofloxacin, moxifloxacin and gatifloxacin // J. Med. Microbiol. – 2013. – Vol. 62. – P. 108-113.
27. Pantel A., Petrella S., Matrat S. et al. DNA gyrase inhibition assays are necessary to demonstrate fluoroquinolone resistance secondary to gyrB mutations in Mycobacterium tuberculosis // Antimicrob. Agents Chemother. – 2011. – Vol. 55. – P.4524-4529.
28. Perdigão J., Macedo R., Malaquias A. et al. Genetic analysis of extensively drug-resistant Mycobacterium tuberculosis strains in Lisbon, Portugal // J. Antimicrob. Chemother. – 2010. – Vol. 65. – P. 224-227.
29. Poissy J., Aubry A., Fernandez C. et al. Should moxifloxacin be used for the treatment of extensively drug-resistant tuberculosis? An answer from a murine model // Antimicrob. Agents Chemother. – 2010. – Vol. 54. – P. 4765-4771.
30. Shi R., Zhang J., Li C. et al. Emergence of ofloxacin resistance in Mycobacterium tuberculosis clinical isolates from China as determined by gyrA mutation analysis using denaturing high-pressure liquid chromatography and DNA sequencing // J. Clin. Microbiol. – 2006. – Vol. 44. – P. 4566-4568.
31. Sulochana S., Narayanan S., Paramasivan C. et al. Analysis of fluoroquinolone resistance in clinical isolates of Mycobacterium tuberculosis from India // J. Chemother. – 2007. – Vol. 19. – P. 166–171.
32. Suzuki Y., Katsukawa C., Tamaru A. et al. Detection of kanamycin-resistant Mycobacterium tuberculosis by identifying mutations in the 16S rRNA gene // J. Clin. Microbiol. – 1998. – Vol. 5. – P. 1220-1225.
33. van Doorn H., An D., de Jong M., et al. Fluoroquinolone resistance detection in Mycobacterium tuberculosis with locked nucleic acid probe real-time PCR // Int. J. Tuberc. Lung Dis. – 2008. – Vol. 12. – P. 736-742.
34. Von Groll A., Martin A., Jureen P. et al. Fluoroquinolone resistance in Mycobacterium tuberculosis and mutations in gyrA and gyrB // Antimicrob. Agents Chemother. – 2009. – Vol. 53. – P. 4498–4500.
35. Wang J., Lee L., Lai H. et al. Fluoroquinolone resistance in Mycobacterium tuberculosis isolates: associated genetic mutations and relationship to antimicrobial exposure // J. Antimicrob. Chemother. – 2007. – Vol. 59. – P. 860-865.
36. Yin, X., Yu, Z. Mutation characterization of gyrA and gyrB genes in levofloxacin-resistant Mycobacterium tuberculosis clinical isolates from Guangdong Province in China // J. Infect. – 2010. – Vol. 61. – P. 150–154.
37. Zaunbrecher M., Sikes R., Metchock B. et al. Overexpression of the chromosomally encoded aminoglycoside acetyltransferase eis confers kanamycin resistance in Mycobacterium tuberculosis // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. – 2009. – Vol. 106. – P. 20004–20009.
38. Zhou J., Dong Y., Zhao X. Et al. Selection of antibiotic-resistant bacterial mutants: allelic diversity among fluoroquinolone-resistant mutations // J. Infect. Dis. – 2000 – Vol. 182. – P. 517-525.
Рецензия
Для цитирования:
Носова Е.Ю., Гикало М.Б., Хахалина А.А., Галкина К.Ю., Сафонова С.Г. Молекулярные механизмы развития широкой лекарственной устойчивости и методы ее определения у M.tuberculosis. Туберкулез и социально значимые заболевания. 2013;(2):56-60.
For citation:
Nosova E.Yu., Gikalo M.B., Hahalina A.A., Galkina K.Yu., Safonova S.G. MOLECULAR MECHANISMS UNDERLYING EXTENSIVELY DRUG-RESISTANT TUBERCULOSIS, AND ASSAYS AVAILABLE FOR ITS DETECTION. Tuberculosis and socially significant diseases. 2013;(2):56-60. (In Russ.)
Просмотров:
37
Послать статью по эл. почте 